Блубо с8: Обзор Bluboo S8 — тест Блубо С8

Опыты Г. Шапошникова по искусственной эволюции

Тля из подсемейства Aphidinae

Яблоня Malus domestica, первичное кормовое растение

Бутень клубневидный Chaerophyllum bulbosum, одно из вторичных кормовых растений

Щавель курчавый Rumex crispus, одно из вторичных кормовых растений

Опыты Г. Шапошникова по искусственной эволюции — серия опытов, проведённых в конце 1950-х — начале 1960-х годов советским биологом Георгием Христофоровичем Шапошниковым, в процессе которых проводилась смена кормовых растений у различных видов тлей. Во время опытов впервые наблюдалась репродуктивная изоляция использованных в эксперименте особей от исходной популяции, что свидетельствует об образовании нового вида.

Содержание

  • 1 Биологические основы опытов
  • 2 Методика исследования
  • 3 Совместимость с новыми хозяевами
  • 4 Адаптация к новым хозяевам
    • 4. 1 A. chaerophyllina
    • 4.2 A. majkopica
  • 5 Интенсивность естественного отбора
  • 6 Репродуктивная изоляция
    • 6.1 Жизненный цикл тлей рода Dysaphis
    • 6.2 Опыты по скрещиванию
  • 7 Интерпретация результатов
  • 8 См. также
  • 9 Примечания
  • 10 Ссылки

Биологические основы опытов

Большинство тлей чрезвычайно специфичны к выбору хозяина (кормового растения) и обитают на растениях только одного рода и даже одного вида. По большей части это определяется их пищевой специализацией, хотя иногда имеет значение строение ног и хоботка, приспособленные к определённому типу поверхности. Тем не менее, среди тлей время от времени происходит смена кормового растения, сопровождаемая долгим периодом пищевой адаптации. Г.Х. Шапошников стал одним из первых биологов, который экспериментально изучил этот процесс[1].

В 1940-х и 1950-х годах пищевую адаптацию тлей исследовали И. В. Кожанчиков[2][3], Е.С. Смирнов и З.Ф. Чувахина[4], однако они не довели опыты до логического завершения, проследив лишь небольшое количество поколений.

Методика исследования

Шапошников исследовал адаптацию при смене кормового растения для тлей подрода Dysaphis CB, s. str. Опыты проводились в 1954—1957 годах на хуторе Шунтук в районе Майкопа и в 1958 году в Ленинграде[1].

Первичными кормовыми растениями для всех видов тлей были яблони Malus orientalis Uglitz. и Malus domestica Borkh. В то же время в районе Майкопа тли могут мигрировать, приобретая вторичного хозяина, указанного в таблице.

Миграции различных видов тлей в районе Майкопа

Виды и подвиды тлейВторичное кормовое растение
Dysaphis anthrisci majkopica Shap., subsp. n.Купырь Anthriscus nemorosa M.B.
Dysaphis anthrisci chaerophyllina Shap.Бутень Chaerophyllum muculatum Willd.
Dysaphis brachycyclica Shap., sp. n.Бутень Chaerophyllum bulbosum L.
Dysaphis radicola Mordv.Щавель Rumex obtusifolius L.
Щавель Rumex crispus L.
Щавель Rumex stenophyllus Ldb.

Несмотря на то, что в литературе описаны случаи миграции тлей на чужеродные растения, Г. Шапошниковым в районе Майкопа ни одного подобного случая не обнаружено.

В отличие от опытов Е.С. Смирнова и З.Ф. Чувахиной[5], которые применяли посуточное чередование старого и нового хозяина, Шапошников использовал поиск случайных благоприятных сочетаний паразита и кормового растения. Во всех опытах использовались чистые клоны, произведённые партеногенетически от одной самки. В каждом случае формировалась популяция из 10 самок-клонов, которым предоставлялся выбор из нескольких вторичных хозяев, растущих в одном вазоне. Растения брались с разных стаций, отличных по почвенным и климатическим условиям.

Клоны, потомки которых лучше всего прижились на новом кормовом растении, были в качестве контрольной группы размножены на 2—3 старых хозяевах и 3—10 новых.

Совместимость с новыми хозяевами

Без адаптации участвовавшие в опытах насекомые были в разной степени совместимы с новыми кормовыми растениями. Во всех опытах A. chaerophyllina могли питаться и размножаться на Ch. bulbosum, но только в 9% опытов они питались и в 4% размножались на Anthriscus

. A. majkopica вообще не размножалась и только в 6% опытов могли питаться на Ch. maculatum[1].

Совместимость (%) тлей с новыми кормовыми растениями[6]

Кормовое растениеA. majkopicaA. chaerophyllina
питалисьразмно-
жались
питалисьразмно-
жались
Ch. bulbosum4033100100
Rumex1583530
Ch. maculatum60вторичный хозяин
Anthriscusвторичный хозяин94

Адаптация к новым хозяевам

A. chaerophyllina

В опытах с A. chaerophyllina тли для формирования контрольной группы были пересажены на Ch. maculatum (вторичный хозяин), где прижились и до осени 1958 года дали на этом растении 47 поколений. Из контрольной группы насекомые пересаживались на новое кормовое растение (Ch. bulbosum), где также прижились, хотя до 8-го поколения их жизнедеятельность была неустойчивой из-за резких колебаний смертности[1].

В некоторых поколениях тли пересаживались с Ch. bulbosum обратно на вторичного хозяина Ch. maculatum, где нормально приживались.

Таким образом, тли A. chaerophyllina в течение 4 поколений на новом хозяине (Ch. bulbosum) вполне освоили его, однако даже после 8 поколений не потеряли способность жить на старом хозяине (Ch. maculatum).

A. majkopica

Смертность личинок тлей А. majkopica при пересадке на различные кормовые растения

Пересадка A. majkopica на Ch. maculatum происходила более сложным путём, поскольку на этом растении A. majkopica без адаптации не способна размножаться. Первоначально насекомые были пересажены на малопригодное для них кормовое растение Ch. bulbosum, которое выполняло роль посредника. Затем насекомые, прижившиеся на Ch. bulbosum, пересаживались на Ch. maculatum.

Для формирования контрольной группы тли были пересажены на Anthriscus (вторичный хозяин), где прижились и размножались до осени 1958 года. С Anthriscus насекомые были пересажены на Ch. bulbosum. До 7-го поколения наблюдались резкие колебания плодовитости и смертности, однако начиная с 8-го поколения жизнедеятельность стабилизировались. На Ch. bulbosum тли прожили 11 поколений, до окончания жизненного цикла этих однолетних растений.

Начиная с 3—5 поколений тли с Ch. bulbosum регулярно пересаживались на Anthriscus. Начиная с 8-го поколения они потеряли способность питаться и размножаться на старом кормовом растении.

Пересадки A. majkopica с Ch. bulbosum на Ch. maculatum показали, что в 8—9 поколениях тли получили способность питаться, а с 10—11 поколений нормально размножаться на ранее совершенно непригодном кормовом растении. Тли 10—11 поколений с Ch. bulbosum были пересажены на Ch. maculatum, где более года нормально жили и размножались.

Все попытки перевести A. majkopica на Ch. maculatum непосредственно с Anthriscus потерпели неудачу за исключением одного случая, когда в 1958 году одна из 30 личинок 48-го поколения прижилась на

Ch. maculatum. Было отмечено, что тли, воспитывавшиеся в Ленинграде в условиях, далёких от естественных, лучше приживались на чужеродных растениях.

Таким образом, тли A. majkopica после 8 поколений адаптации к малопригодному Ch. bulbosum потеряли способность жить на старом хозяине (Anthriscus), но приобрели способность жить на новом, ранее совершенно непригодном Ch. maculatum.

Интенсивность естественного отбора

Средняя смертность личинок тлей на первичном кормовом растении была невелика, хотя для Anthriscus была ниже, что объясняется более высоким содержанием небелкового азота. Во время периода адаптации к новому кормовому растению смертность увеличивалась в десятки раз и в некоторых случаях достигала 100%. По окончании периода адаптации смертность снижалась к уровню, характерному для видов, изначально специализировавшихся на данном растении[1].

Таким образом, естественный отбор интенсифицируется в период адаптации, в привычных же условиях он действует очень слабо. Процесс эволюции представляет собой чередование кратковременных периодов быстрых изменений с периодами относительного покоя и стабилизации.

Средняя смертность личинок (%) при воспитании на разных растениях

ПериодA. majkopica (клон 0197)A. chaerophyllina (клон 0203)
Поко-
ления
Anthriscus
(контроль)
Ch.
bulbo-
sum
Ch.
macula-
tum
Поко-
ления
Ch.
maculatum

(контроль)
Ch.
bulbo-
sum
Период освоения
нового хозяина
4—86,060,4100,05—822,563,8
Первый период
после освоения
9—116,25,020,09—1013,218,6
Последующий
период воспитания
12—475,112,112—4712,2

У A. chaerophyllina адаптация шла в направлении использования нового, но пригодного корма. В результате интенсивность отбора была невелика, соответственно невелика была и глубина адаптации: освоив новое кормовое растение, тли не потеряли способность жить на старом. Адаптации такого уровня до Шапошникова исследовали Смирнов и Чувахина на примере оранжерейной тли Neomyzus circumflexus[4][5] и Кожанчиков на примере листоедов Gastroidea viridula и Galerucella lineola

[2][3].

У A. majkopica шёл процесс освоения нового, ранее малопригодного корма. Интенсивность естественного отбора была чрезвычайно высока. В результате произошла глубокая адаптация, в процессе которой тли потеряли способность жить на старом кормовом растении.

Репродуктивная изоляция

Жизненный цикл тлей рода

Dysaphis

Тли рода Dysaphis двудомны. На своём первичном хозяине (яблоне) они зимуют в виде яиц. Весной из яйца появляется самка-основательница и производит крылатых мигрантов, которые перелетают на вторичного хозяина — зонтичное растение. До осени мигранты размножаются путём партеногенеза и живорождения. Осенью на вторичном кормовом растении появляются ремигранты — самцы и т. н. полоноски, которые возвращаются к первичному хозяину. Здесь полоноски рождают бескрылых номальных (амфигонных) самок, которые спариваются с самцами и откладывают в трещины коры зимующие яйца[7].

Опыты по скрещиванию

В опытах по скрещиванию участвовали три популяции, перечисленные в таблице[7]:

Условное
обозначение
ПодвидКормовое
растение
Примечание
mА.
majkopica
AnthriscusКонтрольная группа. Часть потомков самки-основательницы Dysaphis anthrisci majkopica, выращенные на вторичном хозяине – купыре Anthriscus nemorosa M.B.
nА.
majkopica
Ch.
muculatum
Часть потомков самки-основательницы Dysaphis anthrisci majkopica
, выращенные на новом малопригодном хозяине (бутне Chaerophyllum bulbosum L. ) и адаптировавшиеся там в течение 8 поколений, затем пересаженные на ранее непригодное для них растение – бутень Chaerophyllum maculatum Willd. и размножавшиеся там в течение многих поколений.
cА.
chaerophyllina
Ch.
muculatum
Часть потомков самки-основательницы Dysaphis anthrisci chaerophyllina Shap., выращенные на вторичном хозяине – бутне Chaerophyllum muculatum Willd.

В опытах по скрещиванию нормальные самки одной формы скрещивались с самцами другой формы. Скрещивание производилось в прозрачных изоляторах, накрытых сетчатой тканью (мельничным газом). Кладка производилась либо в трещины коры (если спаривание происходило на яблоне), либо на кусочки бумаги, подкладываемые в изоляторы. Яйца зимовали в холодильнике, и весной из жизнеспособных яиц выходили самки-основательницы. Жизнеспособные яйца заметно отличались по внешнему виду – они были чёрными и блестящими в отличие от матовых, не чёрной окраски и часто сморщенных нежизнеспособных яиц.

Результаты скрещиваний (в просторных изоляторах на яблонях)

Самцыmnc
Самки    m        n        c        m        n        c        m        n        c    
Среднее число яиц на 100 самок118,40,00,012,1173,6208,74,797,5115,0
— из них жизнеспособных45,80,00,03,7121,8178,71,139,277,5

Опыты по скрещиванию показали, что

  • Между А. majkopica (m) и А. chaerophyllina (c) существует практически полная репродуктивная изоляция. При скрещивании m×c (самцы m × самки c) жизнеспособные яйца вообще не появляются, а при скрещивании c×m – в среднем 1 жизнеспособное яйцо на 100 самок.
  • После адаптации А. majkopica (n) на ранее непригодном для него кормовом растении Ch. maculatum возникает практически полная репродуктивная изоляция с исходными видом А. majkopica (m). При скрещивании m×n жизнеспособные яйца вообще не появляются, а при скрещивании n×m – не более 4 жизнеспособных яиц на 100 самок.
  • У насекомых А. majkopica (n), адаптировавшихся к Ch. maculatum возникает репродуктивная совместимость с аборигенным для этого растения подвидом А. chaerophyllina (c). Скрещивание n×с по числу жизнеспособных яиц значительно превышает скрещивания с×с, n×n и m×m, однако скрещивание c×n уступает по этому критерию трём последним, что свидетельствует об определённой остаточной несовместимости.

Интерпретация результатов

Опыты Шапошникова вызвали сенсацию в среде советских биологов, хотя и остались практически неизвестными за рубежом, поскольку были опубликованы в русскоязычной периодике. Образование нового вида в течение нескольких поколений и в сроки, измеряемые месяцами, было явлением беспрецедентным.

Сам Шапошников выдвинул три возможных объяснения этому феномену, и все три признал чрезвычайно маловероятными[8]:

  • Вид n появился в результате проявления рецессивных признаков изначально гетерозиготных особей вида m. Это объяснение маловероятно, поскольку размножение тлей в период адаптации происходило партеногенетически без скрещивания разнополых особей.
  • Вид n является длительной модификацией[9]m. Это объяснение Шапошников отвергает, поскольку превращение m в n оказалось необратимым.
  • Вид n явился результатом повторения (ресинтеза) эволюционного пути, который ранее привёл m в с. Это объяснение Шапошников находит неправдоподобным, поскольку оно противоречит представлениям о необратимости эволюции.

В результате Шапошников не находит объяснения беспрецедентным результатам своих опытов, высказав лишь предположение, что виды c и n возникли из вида m в результате раскрытия неких «эволюционных потенций», изначально присутствовавших у вида m. На основании этого Шапошников классифицирует m, n и с как полувиды (не полностью сформировавшиеся виды), несмотря на наличие у них всех формальных признаков самостоятельных видов[8].

По мнению известного палеоботаника С. В. Мейена, опыты Шапошникова поставили под сомнение одну из концепций эволюционной теории — отсутствие соматической индукции (наследования приобретённых признаков). По этой причине они официально замалчивались и со временем оказались преданы забвению[10].

А. П. Расницин полагает, что быстрые эволюционные изменения в опытах Шапошникова связаны с ужесточением отбора только по одному признаку (непривычное питание) с одновременным ослаблением его по всем остальным (хищники, паразиты, болезни, неблагоприятные погодные условия). Аналогичные изменения наблюдаются у популяций, заселяющих обособленные территории (удалённые острова, озёра), где отсутствует конкуренция со стороны других видов[11].

См. также

  • Долговременный эксперимент по эволюции E. coli
  • Репродуктивная изоляция
  • Доказательства эволюции

Примечания

  1. 1 2 3 4 5 Все материалы данного раздела, кроме абзацев, где источники указаны особо, взяты из статьи Шапошников Г.Х. Специфичность и возникновение адаптации к новым хозяевам у тлей (Homoptera, Aphidoidea) в процессе естественного отбора (экспериментальное исследование) // Энтом. обозр.. — 1961. — Т. XL. — № 4. — С. 739—762.
  2. 1 2 Кожанчиков И.В. Об условиях возникновения биологических форм у Gastroidea viridula Deg. // Тр. Зоолог. инст. АН СССР. — 1941. — Т. VI. — № 4. — С. 16—32.
  3. 1 2 Кожанчиков И.В. Биологические особенности европейских видов рода Galerucella и условия образования биологических форм у Galerucella lineola F. // Тр. Зоолог. инст. АН СССР. — 1958. — № 24. — С. 271—322.
  4. 1 2 Смирнов Е.С., Чувахина З.Ф. Наследование приобретённых свойств и проблема возникновения вредителей // Вестн. Московск. унив.. — 1953. — № 5. — С. 17—26.
  5. 1 2 Смирнов Е.С., Чувахина З.Ф. Возникновение наследственной адаптации к новому кормовому растению у Neomyzus circumflexus Buckt. (Aphididae) // Зоолог. журнал. — 1952. — Т. XXXI. — № 4. — С. 504—522.
  6. Рассчитано по данным, приведённым в статье Шапошников Г.Х. Специфичность и возникновение адаптации к новым хозяевам у тлей (Homoptera, Aphidoidea) в процессе естественного отбора (экспериментальное исследование) // Энтом. обозр.. — 1961. — Т. XL. — № 4. — С. 739—762.
  7. 1 2 Все материалы данного раздела, кроме абзацев, где источник указан особо, взяты из статьи Шапошников Г.Х. Возникновение и утрата репродуктивной изоляции и критерий вида // Энтом. обозр.. — 1966. — Т. XLV. — № 1. — С. 3—35.
  8. 1 2 Шапошников Г.Х. Возникновение и утрата репродуктивной изоляции и критерий вида // Энтом. обозр.. — 1966. — Т. XLV. — № 1. — С. 3—35.
  9. Под «длительной модификацией» понимались значительные, но временные изменения, происходящие при изменении внешних условий. Наиболее характерными примером длительной модификации были изменения, возникавшие при одомашнивании растений и животных, и быстро пропадавшие при повторном одичании.
  10. Мейен C.B. Закон есть закон? // Знание — сила. — 1974. — № 9.
  11. Расницын А.П. Процесс эволюции и методология систематики // в кн. Труды Русского энтомологического общества. — СПб, 2002. — Т. 73. — С. 4—21.

Ссылки

  • Шапошников Г.Х. Специфичность и возникновение адаптации к новым хозяевам у тлей (Homoptera, Aphidoidea) в процессе естественного отбора (экспериментальное исследование) // Энтом. обозр.. — 1961. — Т. XL. — № 4. — С. 739—762.
  • Шапошников Г.Х. Морфологическая дивергенция и конвергенция в эксперименте с тлями (Homoptera, Aphidinea) // Энтом. обозр.. — 1965. — Т. XLIV. — № 1. — С. 3—25.
  • Шапошников Г.Х. Возникновение и утрата репродуктивной изоляции и критерий вида // Энтом. обозр.. — 1966. — Т. XLV. — № 1. — С. 3—35.
  • Шапошников Г.Х. Динамика клонов, популяций и видов и эволюция // Журн. общ. биологии. — 1978. — Т. XXXIX. — № 1. — С. 15—33.
  • Мейен C.B. Закон есть закон? // Знание — сила. — 1974. — № 9.
  • Шишкин М.А. Эволюция как эпигенетический процесс // В кн. : Современная палеонтология. — М.: Недра, 1988. — С. 142—169.
  • Раутиан А.С. Палеонтология как источник сведений о закономерностях и факторах эволюции // В кн.: Современная палеонтология. — М.: Недра, 1988. — Т. 2. — С. 76—118.
  • Шапошников Г.Х. Эволюция некоторых групп тлей в связи с эволюцией розоцветных // Чтения памяти Н. А. Холодковского. — изд. АН СССР, 1951. — Т. 1. — С. 28—60.
  • Шапошников Г.Х. К вопросу о переходе тлей с одних растений на дpyгие // Тр. Зоолог. инст. АН СССР. — 1955. — Т. XXI. — С. 241—246.
  • Шапошников Г.Х. Филогенетическое обоснование системы короткохвостых тлей (Anuraphidina) с учетом их связей с растениями // Тр. Зоолог. инст. АН СССР. — 1956. — Т. XXIII. — С. 215—320.
  • Шапошников Г.Х. Становление смены хозяев и диапаузы у тлей (Aphididae) в процессе приспособления к годичным циклам их кормовых растений // Энтом. обозр.. — 1959. — Т. XXXVIII. — № 2. — С. 483—504.
  • Шапошников Г.Х. Эволюция жизненных циклов тлей в процессе приспособления к циклам их хозяев // The Ontogeny of Insects. — Praha, 1960. — С. 325—328.
  • Шапошников Г.Х., Елисеев Э.И. Жизненные циклы тлей (Aphididae) в связи с биохимическим составом их первичных и вторичных хозяев // Зоолог. журн.. — 1961. — Т. XL. — № 2. — С. 189—192.
  • Шапошников Г.Х. Тли с сокращенным жизненным циклом и летне-зимним днапаузированием // Чтения памяти Н. А. Холодковского. — 1962. — С. 79—95.
  • Шапошников Г.Х. Подотряд — Aphidinea — тли // В кн.: Определитель насекомых европейской части СССР. — 1964. — Т. 1. — С. 489—616.
  • Шапошников Г.Х. Возникновение репродуктивной изоляции в эксперименте с тлями и видообразование // Зоолог. журн.. — 1965. — Т. XLIV.
  • Shaposhnikov G.Ch. The process of origin of a new form at specific level in Dysaphis Burner, through adaptation to a new host plant // Proc. XII Int. Congr. Entom.. — London, 1964. — P. 106—107.
  • Разные равнокрылые — Aphididae.
  • Расницын А.П. Процесс эволюции и методология систематики.
  • Марков А. Начальные этапы видообразования воспроизведены в эксперименте на дрожжах.
  • Чайковский Ю.В. Наука о развитии жизни. 4-18. Злосчастный опыт Шапошникова.
  • Еськов К. Палеонтология и макроэволюция.
  • Жуков Б. Путём естественного отбора.

Отказ холодильного контура — www.itieffe.com

Отказы холодильных контуров

Полная программа внизу страницы

Отказы холодильных контуров

Знать, как устранить проблемы, возникающие в системе, непросто, мы, безусловно, скажем, что это относительно просто, потому что первое, что требуется от специалиста по холодильной технике, — это совершенное знание цикла и работы, которую необходимо выполнить. выполняется каждым отдельным механическим и электрическим органом системы (см. Холодильный контур — основы).

Хороший техник по холодильной технике должен знать гидравлику, тепло, электричество, механику, уметь сваривать, а почему бы и нет, химию. Специалист по холодильной технике — это профессионал, работающий в различных сферах.

В настоящее время сантехники, устанавливающие автономные системы кондиционирования (сплит-системы), считают себя «холодильниками»; это не так, и если иначе не будет развиваться, этого никогда не будет. Техник-холодильщик делает это только те, кто является техником-холодильщиком. Это профессия, которая развивается день ото дня и каждый день дает вам возможность чему-то научиться.

В этой статье даются первые общие указания о том, как проводить анализ наиболее частых неисправностей холодильного контура и предлагаемые методы устранения. Последует вторая, более подробная часть «Недостатки работающих холодильников».

Давайте также проанализируем правила безопасности, которые действуют в этих случаях.

ПРАВИЛА ТЕХНИКИ БЕЗОПАСНОСТИ

  • это оборудование предназначено исключительно для профессионально обученных операторов, которые должны знать основы охлаждения, холодильных систем, газообразных хладагентов и любых повреждений, которые могут привести к оборудованию под давлением.
  • внимательно прочтите руководства производителей, неукоснительное соблюдение проиллюстрированных процедур является важным условием безопасности оператора, целостности оборудования и постоянства заявленных характеристик.
  • компрессор должен работать только с хладагентами, указанными производителем.
  • во время различных операций ни в коем случае не допускайте попадания хладагента в окружающую среду; эта мера предосторожности, помимо требований международных стандартов по охране окружающей среды, необходима для предотвращения того, чтобы присутствие хладагента в окружающей среде затрудняло обнаружение любых утечек.
  • не вмешивайтесь и не изменяйте калибровку систем безопасности и управления.
  • Ни в коем случае попадание кислорода внутрь компрессора не может вызвать взрыв.
  • убедитесь, что характеристики электросети соответствуют характеристикам компрессора.
  • Перед включением компрессора убедитесь, что всасывающий и компрессорный краны полностью открыты, а крышка клеммной коробки закрыта.
  • всегда проверяйте, что компрессор подключен к надежно защищенной электросети, снабженной надежным заземлением.
  • снимать крышку клеммной коробки только после отключения питания компрессора.
  • не запускайте компрессор при высоком вакууме внутри.
  • избегайте вдыхания паров хладагента.
  • желательно использовать соответствующую защиту, такую ​​как защитные очки и перчатки; низкая температура кипения хладагента может причинить физический вред оператору.
  • избегайте контакта хладагента с открытым огнем или горячими поверхностями; при высоких температурах хладагент разлагается с выделением токсичных веществ, вредных как для окружающей среды, так и для оператора.
  • компрессор заправлен азотом под давлением 1 бар; снимать болты компрессора только после снятия удерживающего заряда.
  • трогать компрессор только после длительного простоя; во время работы некоторые его части могут нагреваться до температуры выше 100 ° C, и требуется время, чтобы остыть.
  • всегда руководствуйтесь здравым смыслом.

Другие бесплатные программы, предлагаемые itieffe ▼

  • Хладагентный газ
  • Правило газообразного хладагента
  • Список газов хладагента
  • Схемы электрических частей компрессора
  • Типичные применения газа хладагента
  • Газовый холодильный карты
  • Холодильный контур — основы
  • Нарушения и санкции F-GAS
  • Размеры электрических кабелей — калькулятор
  • Низкая изоляция

Программа/бумага, показанная ниже, бесплатна для использования.

Чтобы получить доступ к зарезервированной версии (см. ниже), полной странице и без рекламы, вы должны быть зарегистрированы.

Вы можете зарегистрироваться сейчас, нажав ЗДЕСЬ

Ошибка 404

Последнее обновление: 20 апреля 2018 г.

Электронная почта и электронные сообщения

Предлагаем вам подписаться на наши информационные бюллетени. Если вы больше не хотите получать от нас корреспонденцию, электронные письма или другие сообщения, вы можете отказаться. Для этого щелкните Отменить подписку в информационных бюллетенях, которые вы получаете от нас.

Больше всего мы ценим вашу конфиденциальность . Мы не продаем, не сдаем в аренду, не одалживаем и не передаем ваш адрес электронной почты или другую личную информацию кому-либо без вашего явного разрешения.

Сбор информации

Вот типы информации, которую мы собираем:

Информация, которую вы нам предоставляете

Мы получаем и храним любую информацию, которую вы вводите на нашем веб-сайте или предоставляете нам любым другим способом. Мы используем информацию, которую вы предоставляете, для таких целей, как ответы на ваши запросы, настройка будущих покупок для вас, улучшение нашего обслуживания и общение с вами.

Данные журнала

Мы собираем информацию, которую ваш браузер отправляет каждый раз, когда вы посещаете наш веб-сайт. Эти данные журнала могут включать в себя такую ​​информацию, как адрес интернет-протокола («IP») вашего компьютера, тип браузера, версия браузера, страницы нашего Сайта, которые вы посещаете, время и дата вашего посещения, время, проведенное на этих страницах, и другую информацию. статистика. Кроме того, мы можем использовать сторонние службы, такие как Google Analytics, которые собирают, отслеживают и анализируют информацию такого типа, чтобы повысить функциональность нашего Сайта. Эти сторонние поставщики услуг имеют свои собственные политики конфиденциальности, касающиеся того, как они используют такую ​​информацию.

Когда вы просматриваете веб-сайт на мобильном устройстве, мы можем автоматически собирать определенную информацию, включая, помимо прочего, тип используемого вами мобильного устройства, уникальный идентификатор вашего мобильного устройства, IP-адрес вашего мобильного устройства, ваш мобильная операционная система, тип мобильного интернет-браузера, который вы используете, информация о вашем местоположении и другие статистические данные.

Файлы cookie

Файлы cookie — это файлы с небольшим объемом данных, которые могут включать анонимный уникальный идентификатор. Файлы cookie отправляются в ваш браузер с веб-сайта и сохраняются на жестком диске вашего компьютера. Как и многие сайты, мы используем файлы cookie для сбора информации. Вы можете указать своему браузеру отказаться от всех файлов cookie или указать, когда файл cookie отправляется. Однако, если вы не принимаете файлы cookie, вы не сможете использовать некоторые разделы нашего Сайта.

Мы также используем информацию отслеживания, чтобы определить, какие разделы нашего сайта нравятся пользователям, а какие нет, на основе посещаемости этих разделов.

Использование информации

Мы используем вашу личную информацию в следующих целях: для администрирования и улучшения сайта и связанных с ним услуг, для уведомления вас о наших продуктах, услугах, рекламных мероприятиях или специальных предложениях, которые могут вас заинтересовать, и т. д.

Аффилированные лица

Мы можем передавать вашу информацию нашим аффилированным лицам, и в этом случае мы потребуем от этих аффилированных лиц соблюдения настоящей Политики конфиденциальности. К аффилированным лицам относятся наша материнская компания и любые дочерние компании, партнеры по совместным предприятиям или другие компании, которые мы контролируем или которые находятся под нашим общим контролем.

Безопасность информации

Мы стремимся защищать личную информацию клиентов. Безопасность вашей личной информации важна для нас, и мы стремимся внедрять и поддерживать разумные, коммерчески приемлемые процедуры и методы безопасности, соответствующие характеру информации, которую мы храним, чтобы защитить ее от несанкционированного доступа, уничтожения, использования, модификации. или раскрытие. Однако имейте в виду, что ни один метод передачи через Интернет или метод электронного хранения не является безопасным на 100%, и мы не можем гарантировать абсолютную безопасность личной информации, которую мы получили от вас.

Изменения в настоящей Политике конфиденциальности

Время от времени мы будем обновлять эту Политику конфиденциальности. Когда мы это сделаем, мы также изменим дату «последнего обновления» в верхней части Политики конфиденциальности.

Полногеномная идентификация и анализ экспрессии генов семейства nsLTP в семенах рапса (Brassica napus) выявили их критическую роль в реакциях на биотический и абиотический стресс

, Чепмен К., Харвуд Дж. Л. Пространственное и временное картирование ключевых видов липидов в Семена Brassica napus . Завод Физиол. 2017; 173:1998–2009. doi: 10.1104/стр.16.01705. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

2. Cui Y., Zeng X., Xiong Q., Wei D., Liao J., Xu Y., Chen G., Zhou Y. , Донг Х., Ван Х. и др. Сочетание количественного локуса признака и анализа коэкспрессии позволило идентифицировать новых кандидатов на накопление масла в семенах рапса. Дж. Эксп. Бот. 2021; 72: 1649–1660. doi: 10.1093/jxb/eraa563. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

3. Yan G., Yu P., Tian X., Guo L., Tu J., Shen J., Yi B., Fu T., Wen J., Лю К. и др. Белки DELLA BnaA6.RGA и BnaC7.RGA негативно регулируют биосинтез жирных кислот, взаимодействуя с BnaLEC1 в Brassica napus . Биотехнология растений. Дж. 2021;19:2011–2026. doi: 10.1111/pbi.13628. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

4. Fitt B.D.L., Brun H., Barbetti M.J., Rimmer S.R. Всемирное значение фомозного рака стебля ( Leptosphaeria maculans и L. biglobosa ) на масличном рапсе ( Brassica napus ) Eur. Дж. Плант Патол. 2006; 114:3–15. doi: 10.1007/s10658-005-2233-5. [CrossRef] [Google Scholar]

5. дель Рио Л.Э., Брэдли К.А., Хенсон Р.А., Эндрес Г.Дж., Хэнсон Б.К., Маккей К., Халворсон М., Портер П.М., Ле Гар Д.Г., Лами Х.А. Влияние Sclerotinia Стеблевая гниль при урожае канолы. Завод Дис. 2007; 91: 191–194. doi: 10.1094/PDIS-91-2-0191. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

6. Koch S., Dunker S., Kleinhenz B., Rohrig M., von Tiedemann A. Модель прогнозирования потери урожая для Sclerotinia стеблевой гнили озимого рапса . Фитопатология. 2007; 97: 1186–1194. doi: 10.1094/PHYTO-97-9-1186. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

7. Раза А. Экофизиологические и биохимические реакции семян рапса ( Brassica napus L.) к абиотическим стрессам: последствия и стратегии смягчения. J. Регулятор роста растений. 2021; 40: 1368–1388. doi: 10.1007/s00344-020-10231-z. [CrossRef] [Google Scholar]

8. Liu S., Fan C., Li J., Cai G., Yang Q., Wu J., Yi X., Zhang C., Zhou Y. Полногеномный Ассоциативное исследование выявило новые элитные аллельные вариации в содержании масла в семенах Brassica napus . Теор. заявл. Жене. 2016;129:1203–1215. doi: 10.1007/s00122-016-2697-z. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

9. Wei L., Jian H., Lu K., Filardo F., Yin N., Liu L., Qu C., Li W., Du H., Li J. Полногеномный ассоциативный анализ и дифференциальный анализ анализ экспрессии устойчивости к стеблевой гнили Sclerotinia в Brassica napus . Биотехнология растений. Дж. 2016; 14:1368–1380. doi: 10.1111/pbi.12501. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

10. Xiao Z., Zhang C., Tang F., Yang B., Zhang L., Liu J., Huo Q., Wang S., Li S., Вэй Л. и др. Идентификация генов-кандидатов, контролирующих содержание масла, путем сочетания полногеномной ассоциации и анализа транскриптома в масличной культуре Brassica napus . Биотехнолог. Биотопливо. 2019;12:216. doi: 10.1186/s13068-019-1557-x. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

11. Chen B., Zhang Y., Sun Z., Liu Z., Zhang D., Yang J., Wang G., Wu J. , Ке Х., Мэн С. и др. Тканеспецифическая экспрессия GhnsLTP, идентифицированная с помощью GWAS, сложным образом координирует устойчивость к болезням и насекомым, регулируя перенаправление метаболического потока в хлопке. Плант Дж. 2021; 107: 831–846. doi: 10.1111/tpj.15349. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

12. Тан С., Чжао Х., Лу С.П., Юй Л.К., Чжан Г.Ф., Чжан Ю.Т., Ян К.Ю., Чжоу Ю. М., Ван Х.М., Ма В. и др. Ассоциативные исследования генома и транскриптома дают представление о генетической основе естественной изменчивости содержания масла в семенах Brassica napus . Мол. Растение. 2021; 14: 470–487. doi: 10.1016/j.molp.2020.12.003. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

13. Ямада М. Белки-переносчики липидов в растениях и микроорганизмах. Физиология клеток растений. 1992; 33:1–6. [Академия Google]

14. Кадер Дж. К. Белки, переносящие липиды: загадочное семейство растительных белков. Тенденции Растениевод. 1997; 2: 66–70. doi: 10.1016/S1360-1385(97)82565-4. [CrossRef] [Google Scholar]

15. Han G.W., Lee J.Y., Song H.K., Chang C.S., Min K., Moon J., Shin D.H., Kopka M.L., Sawaya M.R., Yuan H.S., et al. Структурные основы неспецифического связывания липидов в комплексах белков-переносчиков липидов кукурузы, выявленные с помощью рентгеновской кристаллографии высокого разрешения. Дж. Мол. биол. 2001; 308: 263–278. дои: 10.1006/jmbi.2001. 4559. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

16. Кадер Дж. К. Белки-переносчики липидов в растениях. Анну. Преподобный Завод Физиол. Завод Мол. биол. 1996; 47: 627–654. doi: 10.1146/annurev.arplant.47.1.627. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

17. Carvalho A.d.O., Gomes V.M. Роль растительных белков-переносчиков липидов в физиологии растительных клеток — краткий обзор. Пептиды. 2007; 28:1144–1153. doi: 10.1016/j.peptides.2007.03.004. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

18. Че К., Гононг Б.Дж., Ким С.-К., Кислих К.А., Морикис Д., Баласубраманян С., Лорд Э.М. Многогранное исследование стигмы/стиля цистеина. богатые адгезином (SCA)-подобные белки-переносчики липидов (LTP) Arabidopsis предполагают разнообразную роль этих LTP в росте и размножении растений. Дж. Эксп. Бот. 2010;61:4277–4290. doi: 10.1093/jxb/erq228. [Статья бесплатно PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

19. Zhang D., Liang W., Yin C., Zong J., Gu F., Zhang D. OsC6, кодирующий белок-переносчик липидов, необходим для постмейотического развития пыльников у риса. Завод Физиол. 2010; 154:149–162. doi: 10.1104/стр.110.158865. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

20. Edstam M.M., Blomqvist K., Eklof A., Wennergren U., Edqvist J. Паттерны коэкспрессии указывают на то, что GPI-заякоренные неспецифические белки-переносчики липидов участвуют в накоплении кутикулярного воска, суберина и спорополленина. Завод Мол. биол. 2013; 83: 625–649. doi: 10.1007/s11103-013-0113-5. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

21. Liu F., Zhang X., Lu C., Zeng X., Li Y., Fu D., Wu G. Неспецифические белки-переносчики липидов в растениях: Представляем новые достижения и комплексный функциональный анализ. Дж. Эксп. Бот. 2015;66:5663–5681. doi: 10.1093/jxb/erv313. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

22. Wang X., Zhou W., Lu Z., Ouyang Y., Su C.O., Yao J. Белок-переносчик липидов, OsLTPL36, необходим для развития семян и семян. качество в рисе. Растениевод. 2015;239: 200–208. doi: 10.1016/j.plantsci.2015.07.016. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

23. Salminen T.A., Blomqvist K., Edqvist J. Белки-переносчики липидов: классификация, номенклатура, структура и функции. Планта. 2016; 244:971–997. doi: 10.1007/s00425-016-2585-4. [Статья PMC бесплатно] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

24. Jacq A., Pernot C., Martinez Y., Domergue F., Payre B., Jamet E., Burlat V., Pacquit V.B. Белок-переносчик липидов 2 арабидопсиса (AtLTP2) участвует в целостности интерфейса кутикула-клеточная стенка и в этиолированной проницаемости гипокотиля. Передний. Растениевод. 2017;8:263. дои: 10.3389/fpls.2017.00263. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

25. Deng W., Li R., Xu Y., Mao R., Chen S., Chen L., Chen L., Liu Y. -G., Chen Y. Вариант белка-переносчика липидов с мутантным восьмицистеиновым мотивом вызывает фотопериодическую и термочувствительную карликовость у риса. Дж. Эксп. Бот. 2020;71:1294–1305. doi: 10.1093/jxb/erz500. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

26. Cameron K.D., Teece M. A., Smart L.B. Повышенное накопление кутикулярного воска и экспрессия белка-переносчика липидов в ответ на периодическое высыхание листьев древесного табака. Завод Физиол. 2006; 140:176–183. doi: 10.1104/стр.105.069724. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

27. Yeats T.H., Rose J.K.C. Биохимия и биология внеклеточных растительных белков-переносчиков липидов (LTP) Protein Sci. 2008; 17: 191–198. doi: 10.1110/ps.073300108. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

28. Финкина Е.И., Мельникова Д.Н., Богданов И.В., Овчинникова Т.В. Белки-переносчики липидов как компоненты врожденной иммунной системы растений: структура, функции и применение. Acta Nat. 2016; 8:47–61. doi: 10.32607/20758251-2016-8-2-47-61. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

29. Дас К., Датта К., Кармакар С., Датта С.К. Антимикробные пептиды — небольшое, но мощное оружие растений для борьбы с фитопатогенами. Белковый пепт. лат. 2019;26:720–742. doi: 10.2174/0929866526666190619112438. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

30. Zhao J., Wang S., Qin J., Sun C., Liu F. Белок-переносчик липидов OsLTPL159 участвует в устойчивости к холоду на ранней стадии проростков риса. . Биотехнология растений. Дж. 2020; 18: 756–769. doi: 10.1111/pbi.13243. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

31. Balmant K.M., Ii S.R.L., Duong B.V., Zhu F., Zhu N., Nicklay J., Chen S. Окислительно-восстановительная протеомика защитных клеток раскрывает роль белка-переносчика липидов в защите растений. Дж. Протеом. 2021;242:104247. doi: 10.1016/j.jprot.2021.104247. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

32. Appelhagen I., Lu G.H., Huep G., Schmelzer E., Weisshaar B., Sagasser M. TRANSPARENT TESTA1 взаимодействует с факторами R2R3-MYB и влияет на ранние и поздние стадии. биосинтеза флавоноидов в эндотелии Arabidopsis thaliana 9семена 0052. Плант Дж. 2011; 67: 406–419. doi: 10.1111/j.1365-313X.2011.04603.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

33. Mendes A., Kelly A.A., van Erp H., Shaw E., Powers S.J., Kurup S., Eastmond P.J. bZIP67 регулирует содержание омега-3 жирных кислот в арабидопсисе. растительного масла путем активации десатуразы жирных кислот 3. Растительная клетка. 2013;25:3104–3116. doi: 10.1105/tpc.113.116343. [Статья бесплатно PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

34. Эдстам М.М., Виитанен Л., Салминен Т.А., Эдквист Дж. Эволюционная история белков неспецифического переноса липидов. Мол. Растение. 2011;4:947–964. doi: 10.1093/mp/ssr019. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

35. ДеБоно А., Йейтс Т.Х., Роуз Дж.К.С., Берд Д., Джеттер Р., Кунст Л., Самуэльса Л. Arabidopsis для экспорта липидов на поверхность растений. Растительная клетка. 2009;21:1230–1238. doi: 10.1105/tpc.108.064451. [Статья PMC free] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

GPI-заякоренные белки-переносчики липидов во мхах Physcomitrella patens . Завод Физиол. Биохим. 2014;75:55–69. doi: 10.1016/j.plaphy.2013.12.001. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

37. Ким Х., Ли С.Б., Ким Х.Дж., Мин М.К., Хван И., Су М.К. Характеристика гликозилфосфатидилинозитол-заякоренного белка-переносчика липидов 2 (LTPG2) и функции перекрытия между LTPG/LTPG1 и LTPG2 в экспорте или накоплении кутикулярного воска у Arabidopsis thaliana . Физиология клеток растений. 2012;53:1391–1403. doi: 10.1093/pcp/pcs083. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

38. Xu Y., Zheng X., Song Y., Zhu L., Yu Z., Gan L., Zhou S., Liu H., Wen F., Zhu C. NtLTP4, белок-переносчик липидов, который повышает устойчивость к засолению и засухе у Nicotiana tabacum . науч. 2018; 8:8873. doi: 10.1038/s41598-018-27274-8. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

39. Park C.J., Shin R., Park J.M., Lee G.J., Youl J.S., Paek K.H. Индукция кДНК перца, кодирующей белок-переносчик липидов, во время реакции устойчивости к вирусу табачной мозаики. Завод Мол. биол. 2002; 48: 243–254. дои: 10.1023/A:1013383329361. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

40. Pan Y., Li J., Jiao L., Li C., Zhu D., Yu J. Ген неспецифического белка-переносчика липидов Setaria italica играет решающую роль в условиях абиотического стресса. Передний. Растениевод. 2016;7:1752. doi: 10.3389/fpls.2016.01752. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

41. Jang C.S., Yim W.C., Moon J.-C., Jung J.H., Lee T.G., Lim S.D., Cho S.H., Lee K.K., Kim W. , Сео Ю.В. и др. Эволюция генов неспецифического белка-переносчика липидов (nsLTP) в семействе Poaceae: их дублирование и разнообразие. Мол. Жене. Геном. 2008;279: 481–497. doi: 10.1007/s00438-008-0327-4. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

42. Wei K., Zhong X. Неспецифические белки-переносчики липидов в кукурузе. BMC Растение Биол. 2014;14:281. doi: 10.1186/s12870-014-0281-8. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

43. Kouidri A., Whitford R.,suchecki R., Kalashyan E., Baumann U. Полногеномная идентификация и анализ неспецифического переноса липидов белков гексаплоидной пшеницы. науч. Отчет 2018; 8:17087. doi: 10.1038/s41598-018-35375-7. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

44. Zhang M., Kim Y., Zong J., Lin H., Dievart A., Li H., Zhang D., Liang W. Полногеномный анализ семейства генов неспецифических белков-переносчиков липидов ячменя . Урожай Дж. 2019; 7: 65–76. doi: 10.1016/j.cj.2018.07.009. [CrossRef] [Google Scholar]

45. Li J., Gao G., Xu K., Chen B., Yan G., Li F., Qiao J., Zhang T., Wu X. Полногеномное исследование и анализ экспрессии предполагаемых неспецифических белков-переносчиков липидов в Brassica rapa L. PLoS ONE. 2014;9:e84556. doi: 10.1371/journal.pone.0084556. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

46. Ji J., Lv H., Yang L., Fang Z., Zhuang M., Zhang Y., Liu Y., Li Z. Полногеномная идентификация и характеристика неспецифических белков-переносчиков липидов в капусте . Пир Дж. 2018;6:e5379. doi: 10.7717/peerj.5379. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

47. Li G., Hou M., Liu Y., Pei Y., Ye M., Zhou Y., Huang C., Zhao Y. , Ma H. Полногеномная идентификация, характеристика и анализ экспрессии неспецифических белков-переносчиков липидов в картофеле. БМС Геном. 2019;20:375. doi: 10.1186/s12864-019-5698-x. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

48. D’Agostino N., Buonanno M., Ayoub J., Barone A., Monti S.M., Rigano M.M. Идентификация членов семейства генов неспецифического белка-переносчика липидов в Solanum lycopersicum и понимание особенностей белка Sola l 3. науч. Отчет 2019; 9:1607. doi: 10.1038/s41598-018-38301-z. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

49. Li F., Fan K., Ma F., Yue E., Bibi N., Wang M., Shen H., Hasan M.M.- U., Wang X. Геномная идентификация и сравнительный анализ расширения семейства генов неспецифических белков-переносчиков липидов у Gossypium. науч. 2016;6:38948. doi: 10.1038/srep38948. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

50. Song S., You J., Shi L., Sheng C., Zhou W., Dossou S.S.K., Dossa K., Wang L., Zhang X. Полногеномный анализ семейства генов nsLTP и идентификация SiLTP, способствующих высокому накоплению масла в кунжуте ( Sesamum indicum L.) Int. Дж. Мол. науч. 2021;22:5291. doi: 10.3390/ijms22105291. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

51. Song X., Li E., Song H., Du G., Li S., Zhu H., Chen G., Zhao C. , Qiao L., Wang J., et al. Полногеномная идентификация и характеристика генов неспецифического белка-переносчика липидов (nsLTP) у Arachis duranensis . Геном. 2020;112:4332–4341. doi: 10.1016/j.ygeno.2020.07.034. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

52. van Loon L.C., van Strien E.A. Семейства белков, связанных с патогенезом, их активность и сравнительный анализ белков типа PR-1. Физиол. Мол. Завод Патол. 1999; 55: 85–97. doi: 10.1006/pmpp.1999.0213. [CrossRef] [Google Scholar]

53. Зриби И., Горбель М., Брини Ф. Белки, связанные с патогенезом (PR): от клеточных механизмов до защиты растений. Курс. Белковый пепт. науч. 2021;22:396–412. doi: 10.2174/1389203721999201231212736. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

54. Fahlberg P., Buhot N., Johansson O.N., Andersson M.X. Участие белков-переносчиков липидов в устойчивости к мучнистой росе, не являющейся хозяином, у Arabidopsis thaliana . Мол. Завод Патол. 2019;20:69–77. doi: 10.1111/mpp.12740. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

55. Крайс М., Форде Б.Г., Рахман С., Мифлин Б.Дж., Шьюри П.Р. Молекулярная эволюция запасных белков семян ячменя, ржи и пшеницы. Дж. Мол. биол. 1985;183:499–502. doi: 10.1016/0022-2836(85) -8. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

56. Shewry P.R., Beaudoin F., Jenkins J., Griffiths-Jones S., Mills E.N. Семейства растительных белков и их связь с пищевой аллергией. Биохим. соц. Транс. 2002; 30: 906–910. [PubMed] [Google Scholar]

57. Edqvist J., Blomqvist K., Nieuwland J., Salminen T.A. Белки-переносчики липидов растений: приближаемся ли мы наконец к роли этих загадочных белков? Дж. Липид Рез. 2018;59:1374–1382. дои: 10.1194/jlr.R083139. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

58. Yang Y., Li P., Liu C., Wang P., Cao P., Ye X., Li Q. Систематический анализ Семейство генов неспецифического белка-переносчика липидов в Nicotiana tabacum раскрывает его потенциальную роль в реакциях на стресс. Завод Физиол. Биохим. 2022; 172: 33–47. doi: 10.1016/j.plaphy.2022.01.002. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

59. Бутро Ф., Шантре Н., Готье М.-Ф. Полногеномный анализ семейств генов неспецифического белка-переносчика липидов (nsLtp) риса и арабидопсиса и идентификация пшеницы генов nsLtp с помощью интеллектуального анализа данных EST. БМС Геном. 2008; 9:86. дои: 10.1186/1471-2164-9-86. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

60. Одинцова Т.И., Слезина М.П., ​​Истомина Е.А., Коростылева Т.В., Ковтун А.С., Касьянов А.С., Щербакова Л.А., Кудрявцев А.М. Белки неспецифического переноса липидов в Triticum kiharae Dorof. et Migush.: Идентификация, характеристика и профилирование экспрессии в ответ на патогены и индукторы резистентности. Возбудители. 2019;8:221. doi: 10.3390/pathogens8040221. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

61. Duo J., Xiong H., Wu X., Li Y., Si J., Zhang C., Duan R. Полногеномная идентификация и профиль экспрессии в условиях абиотического стресса семейства генов неспецифических белков-переносчиков липидов ячменя и его ортологов qingke. БМС Геном. 2021;22:674. doi: 10.1186/s12864-021-07958-8. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

62. Xue Y., Chen B., Wang R., Win AN, Li J., Chai Y. Полногеномный обзор и характеристика жирных кислот семейство генов десатуразы в Brassica napus и его родительские виды. заявл. Биохим. Биотех. 2018; 184: 582–598. doi: 10.1007/s12010-017-2563-8. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

63. Xue Y., Jiang J., Yang X., Jiang H., Du Y., Liu X., Xie R., Chai Y. Полногеномный анализ и сравнительный анализ семейства генов элонгазы жирных кислот у Brassica napus и его предшественников. Ген. 2020;747:144674. doi: 10.1016/j.gene.2020.144674. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

64. Блейн Дж. П., Кутос-Тевено П., Марион Д., Понше М. От элиситинов к белкам, переносящим липиды: новое понимание клеточной передачи сигналов, участвующих в защитных механизмах растений. Тенденции Растениевод. 2002;7:293–296. doi: 10.1016/S1360-1385(02)02284-7. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

65. Jia Z., Gou J., Sun Y., Yuan L., Tang Q., Yang X., Pei Y., Luo K. Повышенная устойчивость к грибковым патогенам в трансгенном Populus tomentosa Carr. за счет сверхэкспрессии гена nsLTP-подобного противомикробного белка из пустырника ( Leonurus japonicus ) Tree Physiol. 2010;30:1599–1605. doi: 10.1093/treephys/tpq093. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

66. Wang C., Gao H., Chu Z., Ji C., Xu Y., Cao W., Zhou S., Song Y., Liu H., Чжу С. Неспецифический белок-переносчик липидов, StLTP10, опосредует устойчивость к Phytophthora infestans в картофеле. Мол. Завод Патол. 2021; 22:48–63. doi: 10.1111/mpp.13007. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

67. McLaughlin J.E., Darwish N.I., Garcia-Sanchez J., Tyagi N., Trick H.N., McCormick S., Dill-Macky R., Tumer N.E. Белок-переносчик липидов обладает противогрибковой и антиоксидантной активностью и подавляет фузариоз и накопление ДОН в трансгенной пшенице. Фитопатология. 2021; 111: 671–683. doi: 10.1094/PHYTO-04-20-0153-R. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

68. Safi H., Saibi W., Alaoui M.M., Hmyene A., Masmoudi K., Hanin M., Brini F. Белок-переносчик липидов пшеницы (TdLTP4) повышает устойчивость к абиотическому и биотическому стрессу у Arabidopsis thaliana . Завод Физиол. Биохим. 2015;89:64–75. doi: 10.1016/j.plaphy.2015.02.008. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

69. Zhu X., Li Z., Xu H., Zhou M., Du L., Zhang Z. Сверхэкспрессия гена белка-переносчика липидов пшеницы TaLTP5 повышает устойчивость к Cochliobolus sativus и Fusarium graminearum в трансгенной пшенице. Функц. интегр. Геном. 2012; 12:481–488. doi: 10.1007/s10142-012-0286-z. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

70. Jung H.W., Kim K.D., Hwang B.K. Идентификация чувствительных к патогенам областей в промоторе гена белка-переносчика липидов перца ( CALTPI ) и повышенной устойчивости трансгенного арабидопсиса CALTPI к патогенам и стрессам окружающей среды. Планта. 2005; 221:361–373. doi: 10.1007/s00425-004-1461-9. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

71. Fan Y., Du K., Gao Y., Kong Y., Chu C., Sokolov V., Wang Y. Трансформация гена LTP в Brassica napus для повышения его устойчивости к Sclerotinia sclerotiorum . Генетика. 2013; 49: 439–447. doi: 10.1134/S1022795413040042. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

72. Jiang Y., Fu X., Wen M., Wang F., Tang Q., Tian Q., Luo K. Сверхэкспрессия гена nsLTP-подобного антимикробного белка ( ЛАМП2 ) из ​​пустырника ( Leonurus japonicus ) повышает устойчивость к Sclerotinia sclerotiorum масличного рапса ( Brassica napus ) Physiol. Мол. Завод Патол. 2013;82:81–87. doi: 10.1016/j.pmpp.2012.11.001. [CrossRef] [Google Scholar]

73. Guo C., Ge X., Ma H. Ген OsDIL риса играет роль в устойчивости к засухе на вегетативной и репродуктивной стадиях. Завод Мол. биол. 2013; 82: 239–253. doi: 10.1007/s11103-013-0057-9. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

74. Гангадхар Б.Х., Саджиш К., Венкатеш Дж., Баскар В., Абхинандан К., Ю Дж.В., Прасад Р., Мишра Р.К. Повышенная устойчивость трансгенных растений картофеля со сверхэкспрессией неспецифического белка-переносчика липидов-1 (StnsLTP1) к множественным абиотическим стрессам. Передний. Растениевод. 2016;7:1228. doi: 10.3389/fpls.2016.01228. [Статья бесплатно PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

75. Guo L., Yang H., Zhang X., Yang S. Белок-переносчик липидов 3 как мишень MYB96 опосредует стресс от замерзания и засухи у Арабидопсис . Дж. Эксп. Бот. 2013; 64: 1755–1767. doi: 10.1093/jxb/ert040. [Статья бесплатно PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

76. Эдстам М.М., Эдквист Дж. Участие GPI-заякоренных белков-переносчиков липидов в развитии семенных оболочек и пыльцы у Arabidopsis thaliana . Физиол. Растение. 2014; 152:32–42. doi: 10.1111/ppl.12156. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

77. Katoh K., Standley D.M. MAFFT, версия 7 программного обеспечения для выравнивания множественных последовательностей: улучшенная производительность и удобство использования. Мол. биол. Эвол. 2013;30:772–780. дои: 10.1093/молбев/mst010. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

78. Кумар С., Стечер Г., Тамура К. MEGA7: Молекулярно-эволюционный генетический анализ версии 7.0 для больших наборов данных. Мол. биол. Эвол. 2016; 33:1870–1874. doi: 10.1093/molbev/msw054. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

79. Chen C., Chen H., Zhang Y., Thomas HR, Frank M.H., He Y., Xia R. TBtools: разработан интегративный инструментарий для интерактивного анализа больших биологических данных.

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *